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鼠尾胶原胶凝程序：胶原蛋白I按以下步骤使其pH达到碱性时凝胶。1）将无菌5cm左右的纱布海绵贴在150mm培养皿的盖子上来制备氨蒸气室。用氢氧化铵使纱布饱和，把盖子放在150mm的培养皿上，暂放置一边。2）将胶原蛋白I均匀涂布在要包被物的表面上，厚度可以根据需要改变，胶原蛋白I（50-100μL）足以涂覆22mm的盖玻片。对于直径100mm的培养皿，每个加入约6mL;对于60mm培养皿添加约2.3mL，对于35mm培养皿添加约1mL。3）将涂有胶原蛋白的盖玻片或带有盖子的培养皿转移到氨蒸气室并暴露三分钟。4）在无菌蒸馏水中（35mm培养皿加5mL，60mm培养皿加10mL等）浸泡涂布的盖玻片或培养皿30min。吸取原蒸馏水并加0.5-1.0mL无菌蒸馏水，放置在层流罩中过夜。5）吸出蒸馏水，用含血清的平衡盐缓冲液溶液代替并保存在2-8°C。当我们需要在培养瓶或培养皿内放置小玻片，制备细胞爬片时，可在瓶底涂一层胶原。杭州鼠尾胶原厂家推荐

鼠尾胶原：1实验制备：实验设备及材料：大鼠尾巴、剪刀、镊子、止血钳、弯头吸管、平皿、三角烧瓶、烧杯、量筒、天平、生理盐水、75%酒精、0.1%醋酸溶液、盖玻片、培养瓶、钻石笔、鼠尾胶原。实验内容：1、制备鼠尾胶原（两个同学一组操作）。2、切割小玻片。3、利用鼠尾胶原将小玻片固定于培养瓶内。实验步骤：制备鼠尾胶原：1、取大鼠尾巴洗净，75%酒精浸泡5分钟；2、手持尾巴，用止血钳夹住鼠尾的较高，折断尾骨后拉出尾腱；3、将尾腱剪断置于平皿中，生理盐水浸泡；4、重复步骤2、3，直至尾腱量够用；5、吸去生理盐水，将尾腱称重（0.5-1克）。无锡鼠尾胶原哪里买为了尽可能减少对动物的伤害和方便试验人员的操作，剪下一小段鼠尾是一个不错的选择。

胶原蛋白分离提纯实验方案：提取鼠尾胶原蛋白的实验步骤：1、使用溶解有一定比例胃蛋白酶的酸溶液对初步处理的鼠尾腱进行酶解，持续一段时间待混合物变成无色、透明、粘稠液体后即可在4℃，5000g的离心力下离心20min，收集上清即为粗制鼠尾胶原蛋白原液。2、将一定浓度的氯化钠溶液加入其中，持续搅拌直至白色絮状沉淀从溶液中析出，继续加入氯化铵直至沉淀不在析出为止，4℃，5000g的离心力下离心20min后获得白色沉淀。沉淀物加入一定浓度的醋酸溶液中溶解。3、将溶解后的鼠尾胶原蛋白溶液继续反复进行盐析处理，重复步骤2的过程2~4次。_x005f_x005f_x005f_x000c_鼠尾胶原蛋白经SDS-PAGE蛋白质电泳。论鼠尾胶原能促进毛细胞贴壁，涂布鼠尾胶原有利于膜片钳实验的长时程记录，并且制作简便，成本低廉。

鼠尾胶原蛋白Ⅰ型使用说明：含细胞的三维胶原的制备（以配制1毫升，1mg/ml三维胶为例）：准备好悬浮于培养液的细胞，并放置于冰浴中。将200ul鼠尾胶原蛋白I型(5mg/ml)加到12ul0.1mol/LNaOH中（如果反过来把12ul0.1mol/LNaOH加到胶原溶液中，会由于NaOH不能迅速混匀而产生局部的胶原凝结），立即混匀。再加入23ul10×PBS或10×培养液，混匀(混匀后pH为7左右，如果PBS或培养液中没有加酚红，初次使用时需要用pH试纸测试)。加入760ul的细胞悬浮液，混匀后立即加到培养器皿中。将培养器皿在室温下放置20分钟待胶凝固后，加入适当体积的细胞培养液，转移到培养箱中培养。结论鼠尾胶原能促进毛细胞贴壁。

鼠尾胶原凝胶体在皮肤细胞原代培养中的应用：在国外的药理,毒理和皮肤病学的研究领域中已得到的限翩,否则培养成功率极低.本文采用鼠尾胶原凝胶体作为滋养层,提高了培养细胞的材料和方法r1]实验材料:培养液DEIdE(G皿}ao),表皮细胞生长因子(EGFSigma),小牛血清(上海祟明生物制品厂),氢化可的松,胰岛素(Sigm,青,链霉素,胰蛋白酶,]~DTA,细胞培养皿~35mill(00rningrSA).(2)皮肤基底细胞的分离和细胞悬液的制备:2～3d的新生大鼠(wisr),以75%酒精消毒背部皮肤,剪下皮肤后.以消化12h.轻刷表皮面,收集细胞悬液,加入细胞培养液.用梯度离心收集细胞,以3xi0/m]浓度接种平皿.(3)鼠尾胶原凝胶体的制备:具体方法参见文献c13o(4)培养皿的胶原铺制:i.0ml的酸溶解胶原滴入~35mm培养皿中,铺满平皿底部;将平皿暴露于氨气中30min,然后置空气中30rain,散尽剩余氨气。论鼠尾胶原能促进毛细胞贴壁，涂布鼠尾胶原有利于膜片钳实验的长时程记录，并且制作简便，成本低廉。鼠尾胶原醋酸溶解：在2-8度中放置过夜。开封鼠尾胶原哪家便宜

将鼠尾胶原加入到0.1M的醋酸中，制备成浓度为0.1%的溶液。杭州鼠尾胶原厂家推荐

鼠尾胶原在心肌细胞氧化损伤中的保护作用：两组培养皿中，随着过氧化氢浓度的增高，均可见细胞凋亡状态明显加重，细胞存活率及细胞内过氧化氢活力明显下降，细胞凋亡率及细胞内丙二醛水平明显增高，Bcl-2/Bax比值明显降低，呈剂量依赖性。而在相同浓度过氧化氢诱导下，与对照组相比，实验组细胞凋亡状态明显减弱，细胞存活率、超氧化物歧化酶活力及Bcl-2/Bax比值增高，细胞凋亡率和丙二醛水平明显减低。表明鼠尾胶原对过氧化氢所致的心肌细胞氧化损伤具有保护作用，其机制可能与提高超氧化物歧化酶活力，减少丙二醛产生及提高Bcl-2的表达有关。杭州鼠尾胶原厂家推荐