C-FOS免疫荧光分析

时间:2024年04月17日 来源:

荧光色素:异硫氰酸荧光素(fluoresceinisothiocyanate,FITC)为黄色或橙黄色结晶粉末,易溶于水或酒精等溶剂。分子量为389.4,较大吸收光波长为490495nm,较大发射光波长520530nm,呈现明亮的黄绿色荧光,结构式如下:有两种同分异结构,其中异构体Ⅰ型在效率、稳定性、与蛋白质结合能力等方面都更好,在冷暗干燥处可保存多年,是应用较普遍的荧光素。其主要优点是:①人眼对黄绿色较为敏感,②通常切片标本中的绿色荧光少于红色。四乙基罗丹明(rhodamine,RIB200)为橘红色粉末,不溶于水,易溶于酒精。性质稳定,可长期保存。结构式如下:较大吸收光波长为570nm,较大发射光波长为595~600nm,呈橘红色荧光。在实际工作中,荧光抗原技术应用较少,因此通常将其称为荧光抗体技术或免疫荧光技术。C-FOS免疫荧光分析

C-FOS免疫荧光分析,免疫

免疫荧光间接法测抗体实验注意事项:1)荧光染色后一般在1h内完成观察,或于4℃保存4h,时间过长,会使荧光减弱。2)每次试验时,需设置以下三种对照:①阳性对照:阳性血清+荧光标记物②阴性对照:阴性血清+荧光标记物③荧光标记物对照:PBS+荧光标记物3.已知抗原标本片需在操作的各个步骤中,始终保持湿润,避免干燥。4.所滴加的待检抗体标本或荧光标记物,应始终保持在已知抗原标本片上,避免因放置不平使液体流失,从而造成非特异性荧光染色。C-FOS免疫荧光分析免疫荧光技术可以用于研究神经系统的功能和疾病。

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免疫荧光实验的注意事项:为了保证荧光染色的正确性,初次试验时需设置下述对照,以排除某些非特异性荧光染色的干扰。①标本自发荧光对照:标本加1-2滴0.01mol/L,pH7.4的PBS。②特异性对照(抑制试验):标本加未标记的特异性抗体,再加荧光标记的特异性抗体。③阳性对照:已知的阳性标本加荧光标记的特异性抗体。如果标本自发荧光对照和特异性对照呈无荧光或弱荧光,阳性对照和待检标本呈强荧光,则为特异性阳性染色。一般标本在高压汞灯下照射超过3min,就有荧光减弱现象,经荧光染色的标本较好在当天观察,随着时间的延长,荧光强度会逐渐下降。

直接免疫荧光:单抗体(一抗)用于免疫染色和检测目标蛋白。荧光素结合的一抗直接与目标抗原结合,并使用成像显微镜观察。直接免疫荧光的优点:由于无需为两种抗体选择不同的物种反应性,从而降低了物种交叉反应性问题。与间接免疫荧光相比,时间缩短(操作步骤减少)。直接免疫荧光的缺点:不允许通过二抗进行信号放大;检测灵敏度降低;荧光素结合一抗的选择有限;与使用荧光二抗的检测相比,更昂贵。间接免疫荧光:使用两种抗体(一抗和二抗)进行免疫染色并检测目标蛋白。首先,用特异性一抗标记目标蛋白。然后,荧光素结合的二抗(与一抗具有不同的物种反应性)识别结合的抗原-抗体复合物并与一抗结合。由于一个以上的二抗可以与一抗结合,荧光信号被放大,提供了更高的检测灵敏度。免疫荧光技术通过荧光信号的观察来确定抗原或抗体的分布和定位。

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免疫荧光-实验步骤:细胞爬片免疫荧光:在培养板中将已爬好细胞的玻片用PBS浸洗3次,每次5min;(圆盖片:13mm24孔;18mm12孔;20mm6孔)用4%的多聚甲醛固定爬片15min,PBS浸洗玻片3次,每次5min0.5%TritonX-100(PBS配制)室温通透20min(细胞膜上表达的抗原省略此步骤);PBS浸洗玻片3次,每次3min,吸水纸吸干PBS,在玻片上滴加3%的BSA(PBS配置),室温封闭30min5,吸水纸吸掉封闭液,不洗,每张玻片滴加足够量用PBS稀释好的一抗并放入湿盒,4℃孵育过夜。加荧光二抗:PBS浸洗爬片3次,每次5min,吸水纸吸干爬片上多余液体后滴加稀释好的荧光二抗,湿盒中室温孵育50min。免疫荧光技术可以用于研究细胞分裂和细胞周期。C-FOS免疫荧光分析

早期的免疫荧光技术是将抗体与示踪物质结合,用于定位组织或细胞内的抗原物质。C-FOS免疫荧光分析

免疫荧光通透(目的是使抗体进入胞内),0.5%TritonX-100(一种去垢剂,用PBS配制)室温通透20min(针对胞内抗原,若是细胞膜上表达的抗原则省略该步骤);除了TritonX-100,也可作为通透剂,并且固定后的样品不需要通透。封闭(减少一抗和二抗与非特异位点进行结合),通透后用PBS浸洗玻片3次,每次3min,吸水纸吸干PBS,在玻片上滴加山羊血清,室温封闭30min。常用的封闭液包括:与二抗同一来源的血清、BSA或者是羊血清。从封闭开始所有的步骤,一定要注意样品的保湿,避免样品的干燥,否则极易产生较高的背景。醛类固定的样品,在用一抗孵育前用含0.3M甘氨酸的封闭液进行封闭。C-FOS免疫荧光分析

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