Glut2免疫荧光IF

时间:2024年05月04日 来源:

细胞和组织样品处理:准备荧光标记的细胞样品:为实现较佳的图像质量,首先应建立针对目的蛋白和细胞结构的研究,同时将其他一切背景等排除在图像之外。固定和破膜细胞样品用于标记–首先将细胞结构、蛋白和核酸固定,然后使荧光染料和抗体渗入到细胞内部,标记目的靶点。封闭细胞样品,防止荧光标记物与研究无关的蛋白非特异性结合,较大限度提高信噪比。蛋白封闭液有助于减少非特异染色。抗体能够取代封闭蛋白与其表位形成高亲和力结合,而封闭液可防止样品中的低亲和力结合。免疫荧光技术是基于免疫学、生物化学和显微镜技术的重要方法之一。Glut2免疫荧光IF

Glut2免疫荧光IF,免疫

荧光抗体技术:抗原抗体反应后,利用荧光显微镜判定结果的检测方法。免疫荧光测定:抗原抗体反应后,利用特殊仪器测定荧光强度而推算被测物浓度的检测方法。免疫荧光实验步骤:直接法测抗原:基本原理:将荧光素标记在相应的抗体上,直接与相应抗原反应。其优点是方法简便、特异性高,非特异性荧光染色少。缺点是敏感性偏低;而且每检查一种抗原就需要制备一种荧光抗体。此法常用于细菌、病毒等微生物的快速检查和肾炎活检、皮肤活检的免疫病理检查。Glut2免疫荧光IF免疫荧光技术是将抗体与荧光素等示踪物质结合,通过抗原抗体反应进行定位。

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细胞免疫荧光简单实验步骤如下:1. 漂洗血清蛋白H7、2-7、4 37度 PBS 2小时。2. -20度甲醇固定20分钟后,自然、干燥 10分钟。3. PBS洗净:3min×3。4. 1%Triton:25 min~30 min、配成50 ultriton+5 mlpBS。5. PBS洗净:2×5 min。6. 羊血清封闭:37度,20分钟。7. 一抗,4度过夜,一般要大于18小时或者37度,1-2小时。8. 4度PBS洗净,3 min×5次。9. 二抗37度小于一小时。10. 37度 PBS洗净,3×5 min。11. 凉干封片(封闭液PH8.5);不管采用何种方法,在使用PBS缓冲液漂洗时,都要漂洗干净并且要测下pH值,可以使用PBS多清洗几次,也可以延长PBS清洗时间,如果结果背景较高可以延长漂洗的次数和时。

细胞爬片的免疫荧光步骤基本一致:1. 取出细胞爬片放到35mm或60mm用过的细胞培养皿里,PBS洗三遍。注意:有的时候作的细胞爬片可能比较小,因此夹取的时候要小心,注意 反正面,放在皿里洗比较方便,避免了来回夹取,另外洗的时候加PBS不要太冲,不要细胞冲下来。洗的时候我都是多加PBS,稍晃一下就倒掉,没有等5分钟或10分钟。2. 4%冷的多聚甲醛固定20分钟,PBS洗三遍。3. 0.2%Triton X-100通透10分钟,PBS洗三遍。4. 与二抗相同宿主的血清封闭30分钟,PBS洗三遍。5. 一抗4度湿盒内过夜,也可37度2小时,感觉前者效果好,PBS洗三遍。6. 二抗室温2小时(避光),或者37度1半小时,PBS洗三遍。7. 较好用DAPI染核,然后直接照荧光片。8. 蒸馏水洗掉PBS,甘油封片,指甲油封片子的四周,因为甘油不象树脂那样会干,所以不用指甲油封的话会弄的一塌糊涂。免疫荧光技术可以用于研究病毒传播和免疫应答。

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直接免疫荧光:单抗体(一抗)用于免疫染色和检测目标蛋白。荧光素结合的一抗直接与目标抗原结合,并使用成像显微镜观察。直接免疫荧光的优点:由于无需为两种抗体选择不同的物种反应性,从而降低了物种交叉反应性问题。与间接免疫荧光相比,时间缩短(操作步骤减少)。直接免疫荧光的缺点:不允许通过二抗进行信号放大;检测灵敏度降低;荧光素结合一抗的选择有限;与使用荧光二抗的检测相比,更昂贵。间接免疫荧光:使用两种抗体(一抗和二抗)进行免疫染色并检测目标蛋白。首先,用特异性一抗标记目标蛋白。然后,荧光素结合的二抗(与一抗具有不同的物种反应性)识别结合的抗原-抗体复合物并与一抗结合。由于一个以上的二抗可以与一抗结合,荧光信号被放大,提供了更高的检测灵敏度。在实际工作中,荧光抗原技术应用较少,因此通常将其称为荧光抗体技术或免疫荧光技术。OPN免疫组化

免疫荧光技术可以用于研究细胞内分子的相互作用。Glut2免疫荧光IF

荧光的产生:一此化学物质能从外界吸收并储存能量(如光能、化学能等)而进入激发态,当其从激发态再回复到基态时,过剩的能量可以电磁辐射的形式放射(即发光)。荧光发射的特点是:可产生荧光的分子或原子在接受能量后即刻引起发光;而一旦停止供能,发光(荧光)现象也随之在瞬间内消失。可以引起发荧光的能量种类很多,由光激发所引起的荧光称为致荧光。由化学应所引起的称为化学荧光,由X线或阴极射线引起的分别称为X线荧光或阴极射线荧光。荧光免疫技术一般应用致荧光物质进行标记。Glut2免疫荧光IF

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