贵州如何验证外泌体载药成功

通过体外实验结果得出，负载miＲ-132的间充质干细胞外泌体能够明显增加内皮细胞的管腔样结构;在体内实验中，外泌体预处理的人脐静脉内皮细胞具有更强的血管生成能力。此外，在小鼠缺血心脏中植入的包载miＲ-132的外泌体明显增强了梗塞周围区域新血管生成并保护了心脏功能。心肌梗死后，移植MSCs的zhiliao作用也可能是由负载miＲ-125b-5p的外泌体改善自噬流实现的。有研究利用重组腺病毒介导miＲ-486基因修饰MSCs，结果发现，其能够提高MSC-Exo中miＲ-486的水平，而且发现高表达miＲ-486的MSC-Exo具有促进心肌细胞增殖、迁移以及抑制心肌细胞凋亡的作用，有望成为心脏再生修复的新策略。间充质干细胞外泌体能递送14-3-3ζ预防顺铂造成的肾毒性损伤，具有修复肾损伤的作用。贵州如何验证外泌体载药成功

外泌体作为一种潜在的理想型药物递送载体，可以利用化学和基因工程等方法对其进行内部及膜表面工程化改造，将化学药物、功能短肽、小干扰RNA等多种生物活性物质包载到外泌体中，可实现特定类型的细胞或组织的靶向药物递送。目前，常用的实现外泌体包载药物方法有膜融合法、电穿孔法及基因工程法等。膜融合法-利用外泌体句有磷脂双分子层膜结构这一特性，可使用共孵育、聚碳酸酯膜挤压等外源性方法使外泌体与其他类型膜结构或药物融合。电穿孔法-也叫电转染，是一种新型外泌体包载核酸药物的生物技术。基因工程法-外泌体的基因修饰是将目的基因转入供体细胞，使外泌体膜上功能配体过表达的一种可行策略。贵州如何验证外泌体载药成功外泌体有良好的生物相容性、高生物渗透性、低免疫原性、低毒性，可作为药物载体。

外泌体载药系统一直是众多研究者关注的焦点。将连接G11靶向肽的外泌体（G11-EXOs）用于递送中流抑制性miRNA到高表达EGFR的乳腺ai组织中。研究人员将DiR标记的G11-EXOs和未经修饰的外泌体尾静脉注射入荷瘤小鼠体内24h后，通过huo体成像观察G11-EXOs组在中流部位的荧光强度是未连接靶向肽外泌体组荧光强度的3倍，说明G11-EXOs在体内句有良好的靶向效果。随后，研究人员将let-7amiRNA包载到G11－EXOs中并静脉注射到小鼠体内，发现它能准确定位到中流组织，明显抑制中流的生长。

外泌体直接载yao方式包括皂苷处理法、孵育法、冻融循环法、超声法和挤出法等。皂苷处理法指共培养外泌体、药物和皂苷溶液，然后通过透析膜、色谱柱纯化得到载药外泌体的方法。孵育法指药物和外泌体在适宜的条件下共培养。冻融循环法是经过冷冻、融化过程使外泌体包裹药物。超声法利用超声波使药物进入外泌体中，挤出法利用挤出机实现外泌体载带药物。其中皂苷辅助药物装载方法是直接载yao方式中常用的一种载yao方式。上述方法也存在一些缺点：孵育法操作简单，但载药量低；冻融循环法、超声法和挤出法对仪器的要求高，且可能会破坏外泌体的质膜结构造成药物泄露，终造成载药量不理想。负载姜黄素的外泌体能促进抗精神类药物作用下的细胞胆固醇外流, 减少因药物不良反应造成的细胞内脂质沉积。

外泌体的脂质双分子膜可以保护其在血液循环中不被降解,但是这种膜结构以及其内含各种丰富的物质,使得外泌体载药变得困难。外泌体只有保证膜结构的完整性,才能不引起免疫反应,不被MPS吞噬。目前,将药物载入外泌体的方法主要有两种:(1)前转载,在分离外泌体之前,将药物与母代细胞共培养和对母代细胞进行转染,可以让母代细胞分泌含有药物的外泌体; 主要是用转染剂将“货物”转染进入亲代细胞(或者将“货物与亲代细胞孵育”),然后收集培养基,获得载有“货物”的外泌体的过程。该方法的主要问题是合适有效的转染试剂很少,且转染试剂无法完全去除,导致转染效率低,无法排除转染试剂对实验的影响。(2)后转载,分离出外泌体之后,将药物载入外泌体。外泌体成分复杂，未装载药物的外泌体可能促进供体中流细胞的增殖。湖南动物细胞样本外泌体载药实验参考价格

使用ADSC外泌体装载姜黄素可增强抗肝ai的效应。贵州如何验证外泌体载药成功

中流细胞的异常增殖和高迁移水平是恶性中流细胞发生转移的重要特征。通过实验可以用含药外泌体DATS-Exo、空白外泌体Exo和DATS处理B16BL6细胞24h后,然后采用MTT的方法检测细胞的增殖活性。实验结果显示,DATS-Exo与DATS都能够有效抑制B16BL6细胞的增殖,且与DATS组相比,DATS-Exo的抑制作用更强。通过经典的划痕法考察含药外泌体DATS-Exo的抑制中流细胞水平迁移能力，DATS-Exo组与DATS组相比具有更强的抑制效果。实验结果表明,将大蒜素DATS制备成外泌体载药系统是可以明显提高其体外抗中流细胞转移的能力。贵州如何验证外泌体载药成功