北京细胞培养支原体检测方法bst
时间：2024年06月16日
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细胞培养中，需要去除支原体的污染：支原体污染是细胞培养中 普遍的问题之一，细胞库中或正在使用的细胞中，支原体的污染率约为15%-35%。并对培养细胞的生理和代谢造成诸多影响：
01/ 争夺营养 – 阻碍细胞生长和增殖
02/ 改变蛋白质、RNA 或 DNA 合成的水平
03/ 改变基因表达、细胞信号传导和形态
04/ 损害膜和细胞器
05/ 导致突变和染色体变化
06/ 时间、金钱和有价值的细胞丢失，耽误研究时间
07/ 实验结果的不可靠性，实验结果的重复性 降低
08/ 生物安全问题
支原体污染如何预防？北京细胞培养支原体检测方法bst
对于同一个样品，如果PCR检测结果为阳性而一步法恒温检测试剂盒结果为阴性，可能的原因包括：
1. 灵敏度差异：PCR方法通常具有较高的灵敏度，可以检测到单个拷贝的支原体DNA。相比之下，一步法恒温检测试剂盒可能需要更高的支原体拷贝数才能检测出阳性结果，例如需要10^3个拷贝。如果样品中的支原体数量低于一步法试剂盒的检测阈值，就可能出现PCR阳性而一步法阴性的情况。
2. 检测范围：PCR检测可以针对特定的支原体序列设计引物，如果样品中的支原体种类或序列与一步法试剂盒的检测范围不完全匹配，可能导致一步法检测不出。
3. 样品处理和提取：一步法恒温检测试剂盒可能对样品的处理和DNA提取有特定的要求。如果样品处理不当或DNA提取效率不高，可能会影响一步法试剂盒的检测结果。
4. 试剂盒特异性：一步法恒温检测试剂盒可能设计用于检测特定的支原体种类，如果样品中的支原体与试剂盒的特异性不匹配，可能导致假阴性结果。
5. 抑制物的影响：PCR检测可能对样品中的某些抑制物不那么敏感，而一步法恒温检测试剂盒可能更容易受到这些抑制物的影响，从而降低检测的灵敏度。
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细胞培养中支原体难以彻底消灭的原因主要包括以下几点：
1. 无细胞壁结构：支原体是没有细胞壁的微生物，这使得许多作用于细胞壁的抗*素对支原体无效。
2. 微小体积：支原体体积小，能够穿过常规的除菌滤膜，例如0.20微米甚至0.10微米的滤膜。
3. 隐匿性：支原体污染初期很难被察觉，它们在普通光学显微镜下几乎不可见，因此细胞被支原体污染后，前期很难被发现。
4. 传播途径多样：支原体可以通过细胞培养物、细胞悬液、细胞培养用具等途径迅速传播。
5. 污染源 ：支原体污染源包括细胞间的交叉污染、操作人员的口腔、皮肤，以及细胞培养用的组分如血清、培养液等。
6. 环境因素：实验室环境、试验台、超净台、培养箱等可能被支原体污染，引起细胞的污染。
7. 抗*素耐药性：支原体可能对某些抗*素产生耐药性，使得治*效果变差。
8. 检测和清理方法的局限性：一些传统的支原体检测和清理方法可能不够灵敏或有效，导致难以彻底清理支原体
qPCR法，即定量聚合酶链式反应（Quantitative Polymerase Chain Reaction）法，是一种高度灵敏和特异的分子生物学技术，用于检测和定量DNA序列。在支原体检测中，qPCR法的原理主要包括以下几个步骤：
1. DNA提取：首先从待测样本中提取DNA，这可能包括细胞培养上清液或组织样本中的支原体DNA。
2. 设计特异性引物：针对支原体的保守DNA序列，如16S rRNA基因，设计特异性的DNA引物。
3. 荧光标记探针：使用荧光标记的探针，该探针与目标DNA序列互补，能够在PCR扩增过程中与扩增的DNA结合。
4. Ct值确定：Ct值（阈值循环数）是指在PCR反应中，荧光信号强度超过预定阈值的循环次数。Ct值越低，表示样本中支原体DNA的量越多。
5. 定量分析：通过标准曲线法或相对定量法，将Ct值转换为支原体DNA的定量结果。
qPCR法的优势在于其高灵敏度和特异性，能够检测到非常低水平的支原体污染，并且可以在短时间内提供结果，这对于需要快速检测的生物制品生产和细胞培养质量控制非常重要
支原体检测的应用场景？
检测新鲜培养基是否有支原体污染，可以采用以下五种方案：
1. 培养法：这是一种传统且可靠的方法，通过将培养基接种到适宜支原体生长的微生物培养基或琼脂平板上，观察是否有支原体生长。这种方法较为耗时，但成本较低。
2. 荧光染色法：使用特定的荧光染料（如Hoechst 33258）对细胞进行染色，然后在荧光显微镜下观察。如果存在支原体污染，可以看到细胞表面或细胞间隙中支原体DNA的荧光染色。
3. PCR法：通过设计针对支原体特定序列的引物，利用PCR技术特异性扩增目标DNA。PCR产物通过琼脂糖凝胶电泳进行检测，如果出现条带则表明存在支原体污染。
4. 电镜观察法：使用电子显微镜直接观察培养细胞中的支原体污染情况。这种方法可以提供直观的支原体形态信息，但设备要求较高。
5. 一步法恒温支原体检测：使用特定的试剂盒，如Yeasen一步法恒温支原体检测试剂，采用等温扩增技术，通过颜色变化（由蓝紫色变为天蓝色）进行快速检测。
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LAMP法，即环介导等温扩增技术（Loop-mediated isothermal amplification），是一种在恒定温度下进行的核酸扩增方法。它由日本学者Notomi于2000年开发。LAMP法检测有以下特性：
快速高效：LAMP技术可以在1小时内把几拷贝的目的序列迅速扩增到10^9^～10^10^拷贝，扩增效率高。
简便性：LAMP技术不需要进行模板的预变性，减少了PCR技术升降温带来的影响以及对昂贵、精密实验仪器的要求，同时扩增效率高，可以在较短时间内完成检测。
LAMP法因其快速、高效、特异、灵敏和经济等优点，已经应用于病原菌、寄生虫、病毒、疾病和转基因产品检测等领域，并且还将广泛应用于临床诊断、环境监测、食源安全等领域，具有更为广阔的发展应用前景。
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