贵州专业实验动物模型构建

阿尔茨海默病实验动物模型。目前常用研究AD的实验动物有非人灵长类动物与啮齿类动物，在选择时遵循“减少、替代、优化”的3R原则。非人灵长类动物与人类的脑部解剖结构、神经病变特点以及生物行为模式相似，尤其是恒河猴，在其脑中观察到含有Aβ沉积的老年斑和神经原纤维缠结现象，无论是自发还是诱发模型，都能够较好的复制AD相关的病理及生理特征，但是昂贵的费用与稀少的资源限制了非人灵长类动物的大量应用。啮齿类动物虽然在病变模拟方面不如非人灵长类全方面的，但是具有价格低廉、资源范围很广的、生存率高等特点，与人类的脑部解剖结构与生理特征也较为相近，更适于诱导模型的大量制备，成为AD应用更范围很广的的动物模型。许多AD小鼠模型的背景品系是C57BL/6J小鼠，然而这种品系的小鼠似乎对类似AD的神经病理学具有特别的抵抗力。英瀚斯实验动物模型制作，提供造模方法、原始数据！贵州专业实验动物模型构建

阿尔茨海默病的实验动物模型之化学损伤动物模型。主要是以向模型鼠脑部、皮下或腹腔注射特定物质来建立模型，如通过立体定位仪、微透析等方法向实验动物脑内海马、基底核、侧脑室等不同部位注入Aβ 片段，鹅蒿蕈氨酸（IBO）、STZ 等物质。或通过皮下或腹腔注射 D-半乳糖、三氯化铝、冈田酸（OKA）和东莨菪碱（SCOP）等致损物质。

Aβ 诱导模型，Aβ诱导模型是通过在海马CA1区或者侧脑室多次注射Aβ片段诱发Aβ沉积、形成SP为主要病理特点的AD动物模型。Aβ诱导的AD动物模型脑内Aβ沉积明显、Aβ斑块周围星形胶质细胞增生，行为呆滞，易卧，学习记忆能力衰退，出现认知功能障碍、体能衰减明显等AD病理表现。Aβ诱导动物模型，影响因素单一，模型形成时间长，造模过程中，有对脑组织造成穿透性损伤的不确定性，另外，由于注射部位过于集中，使Aβ沉积部位与AD患者Aβ在脑内多区域分布有所不同。 河南构建实验动物模型英瀚斯生物，专业技术团队，熟练掌握各类实验动物模型构建。

人类疾病实验动物模型是指医学研究中建立的具有人类疾病模拟表现的实验对象和相关材料。人类各种疾病的发生、发展是十分复杂的，但以人作为实验对象来研究是有局限性的，许多实验在道义上也受到限制，不可能也不允许在人体上进行实验，但利用动物复制疾病模型加以研究，克服这些不足。在复制动物模型时，所采用的方法应尽量做到容易执行和合乎经济原则。灵长类动物与人近似，复制的疾病模型相似性好，但稀少昂贵，即使猕猴也不可多得，更不用说猩猩、长臂猿。除了在动物选择上要考虑易行性和经济性原则外，而且在模型复制的方法上、指标的观察上也都要注意这一原则。

诱导式关节炎模型根据造模物质的不同进行分类，常见的有佐剂诱导型、胶原诱导型和胶原抗体诱导型关节炎。其中大鼠CIA模型的组织和免疫学改变与人RA**接近，AA模型的病情表现**为明显和持续。

（一）佐剂诱导型（AA）AA，又称为弗氏佐剂关节炎，介导溶剂分为完全佐剂（CFA）和不完全佐剂（IFA）。通常用CFA作介导剂，AA模型在T细胞相关致炎通路的药物筛选上发挥着重要的作用。

（二）胶原诱导型（CIA）CIA模型是由Trentham等于1977年***建立的实验性关节炎动物模型。通过皮下注射Ⅱ型胶原和等量CFA的混合液来建造，来源于鸡、小牛和大鼠的Ⅱ型胶原均能引起关节炎症。CIA是MHC相关型，以T/B淋巴细胞介导的关节炎症侵蚀为主要特征。

（三）胶原抗体诱导型(CAIA)抗Ⅱ型胶原单克隆抗体源自8周大的雄性DBA/1J小鼠CIA模型，这些抗体混合物注射到模型小鼠的关节腔后可直接作用于Ⅱ型胶原或其他在体内高表达的自身抗原，从而发挥免疫介导作用。该模型的临床症状与CIA和RA很相似，突出特点是能在几天之内迅速发病，关节组织中巨噬细胞和多核型白细胞浸润。该模型很好的体现了外源性抗原抗体刺激体诱导的严重关节损伤。 英瀚斯生物 专业的实验动物模型构建平台。

双转基因实验动物模型。利用基因打靶技术培育出的APP/PS-1双转基因鼠，在3月龄时出现学习记忆障碍、Aβ增多和形成SP，6月龄时即可出现严重的学习记忆力衰退、认知功能障碍，神经元变性和突触丢失等多种AD病理特性。对AD 病理特征Aβ和SP方面的研究主要采用APP/PS-1双转基因鼠。但其外源性基因表达不够稳定性、动物价格高。

APP/PS1/Tau 三转因模型。APP/PS1/Tau 三转基因小鼠模型是由APPSwe、PS1、TauP301L基因系突变建立的，首先在皮质区和出现Aβ异常沉积、SP 和NFTs 形成，随后海马区也逐渐出现 Aβ沉积、SP和NFTs，以及突触丢失、神经元变性AD临床病理表现。APP/PS1/Tau三转基因小鼠模型是目前与AD 病理特征接近的转基因动物模型，但其外源性基因表达稳定性较差、造模较困难且造价高。 转基因实验动物模型哪里有卖?贵州专业实验动物模型构建

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肝纤维化模型实验动物模型

1.诱导方法：1)成年雄性小鼠40%CCL4，皮下注射或灌胃5mL/kg。每三天/次，连续8周。成年雄性大鼠皮下注射60％CCl4（3ml/kg），每周2次，共9周。2)成年雄性大鼠1％二甲基亚硝胺DMN（10mg/kg），1次/d，2次/周，连续4周。3)成年雄性大鼠腹腔注射硫代乙酰胺（100mg/kg）隔日腹腔注射1次，连续13周。4)成年大鼠，灌胃给白酒7g/kg体重，每日晨1次，连续24周。

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