宁波医学膜片钳成像

膜片钳使用操作流程及注意事项：1.实验结束后必须关闭实验室的水电，检查实验室门窗。2.凡是在本平台使用仪器的同学必须履行实验室相关要求，完成值日等相关工作（值日生按照实验室统一所发值日生要求履职）。3.在仪器使用以前及使用之后按按照使用时长做好登记工作。4.拉制仪提前预热（至少30min）。且用完及时关闭。电热加热线温度很高，在使用时注意避免烫伤。4.电脑里面的软件不得随意删改，不得在本机电脑下载别的软件，拷数据时需用实验室配置的U盘。5.禁止私拉电线，如有实验要求可与老师及时沟通。膜片钳技术用特制的玻璃微吸管吸附于细胞表面，使之形成10~100MΩ的高阻封接，被孤立的小膜片面积为微米数量级，因此封接范围内细胞膜光有少数离子通道。膜片钳使用操作注意：不得在本机电脑下载别的软件，拷数据时需用实验室配置的U盘。宁波医学膜片钳成像

膜片钳技术本质上也属于电压钳范畴，两者的区别关键在于：①膜电位固定的方法不同；②电位固定的细胞膜面积不同，进而所研究的离子通道数目不同。电压钳技术主要是通过保持细胞跨膜电位不变，并迅速控制其数值，以观察在不同膜电位条件下膜电流情况。因此只能用来研究整个细胞膜或一大块细胞膜上所有离子通道活动。目前电压钳主要用于巨大细胞的全性能电流的研究，特别在分子克隆的卵母细胞表达电流的鉴定中发挥着其他技术不能替代的作用。宁波医学膜片钳成像膜片钳使用的注意事项：打雷天气必须禁止膜片钳实验。

膜片钳技术之全细胞式与细胞吸附式的区别：全细胞式记录这个名字乍听上去好像和细胞吸附式没啥两样，无非就是把电极戳在细胞上然后记录它的电活动。但事实是，这两者存在天壤之别。首先的一大区别体现在外部构型上：在cell-attached的记录中，我们不需要用电极戳破细胞膜，只需将其怼在细胞膜上即可；但在whole-cell的记录中，我们不只要将电极怼进细胞膜内，而且还不能怼得过深或过浅，否则你就无法记录到有用的电信号。概括一下就是，要形成全细胞记录必须打破细胞膜，但由于这个操作比较厉害，所以要破膜时请相信玄学。其次，第二大区别在电阻补偿上：在cell-attached的记录中，由于我们无需打通细胞内外膜，因此细胞膜上的各种离子通道或蛋白质就没有串联在电路当中，但是在whole-cell中，串联电阻（Rs）就存在了，因此软件输出的命令电压也就不等于细胞的跨膜电位，故我们需要对其进行补偿。这些注意事项包括：电极电容及细胞膜电容补偿问题，漏电流问题，液接电位的校正问题，空间钳位问题，细胞内容物被电击内液稀释问题，电极内液的成分问题等。

膜片钳技术——打开细胞电生理之门：定义：膜片钳技术被称为研究离子通道的“金标准”，是一种基于电工学和电化学原理的分析手段，可以通过检测细胞的电信号(电生理性质)来研究化学物质、电、机械力等刺激因素对细胞功能的影响，从而帮助揭示细胞在生命活动中的化学和生物学机制。原理：膜片钳技术是用玻璃微电极吸管把只含1-3个离子通道、面积为几个平方微米的细胞膜通过负压吸引封接起来，由于电极与细胞膜的高阻封接，在电极笼罩下的那片膜事实上与膜的其他部分从电学上隔离，因此，此片膜内开放所产生的电流流进玻璃吸管，用一个极为敏感的电流监视器（膜片钳放大器）测量此电流强度，就替代单一离子通道电流。膜片钳使用操作注意：电热加热线温度很高，在使用时注意避免烫伤。

膜片钳技术在通道研究中的重要作用：1.与药物作用有关的心肌离子通道：心肌细胞通过各种离子通道对膜电位和动作电位稳态的维持而保持正常的功能。近年来，国外学者在人类心肌细胞离子通道特性的研究中取得了许多进展，使得心肌药理学实验由动物细胞模型向人心肌细胞成为可能。2.对离子通道生理与病理情况下作用机制的研究：通过对各种生理或病理情况下细胞膜某种离子通道特性的研究，了解该离子的生理意义及其在疾病过程中的作用机制。膜片钳技术的应用范围：与药物作用有关的心肌离子通道研究。宁波医学膜片钳成像

全自动膜片钳系统技术指标：信号准确，噪声少，使用了先进的微型“法拉第板”替代传统的“法拉第笼”。宁波医学膜片钳成像

膜片钳技术的基本原理和方法：膜片钳使用的基本方法是，把经过加热抛光的玻璃微电极在液压推进器的操纵下，与清洁处理过的细胞膜形成高阻抗封接，导致电极内膜片与电极外的膜在电学上和化学上隔离起来，由于电性能隔离与微电极的相对低电阻（1～5MΩ），只要对微电极施以电压就能对膜片进行钳制，从微电极引出的微小离子电流通过高分辨、低噪声、高保真的电流-电压转换放大器输送至电子计算机进行分析处理。膜片钳技术实现的关键是建立高阻抗封接，并能通过特定的记录仪器反映这些变化。膜片钳技术用特制的玻璃微吸管吸附于细胞表面，使之形成10~100MΩ的高阻封接。宁波医学膜片钳成像

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