湖州神经元单光纤成像技术

根据在体光纤成像记录成像方式的不同, 在体生物发光成像主要有生物发光成像,和生物发光断层成像两种。其中,输出是二维图像, 即生物体外探测器上采集的光学信号，其原理简单、 使用方便快捷, 适用于 定性分析及简单的定量计算, 但无法获得生物体内发光光源的深度信息, 难以实现光源的准确定位。 而成像系统则利用 多个生物体外探测器上采集的光学信号, 根据断层成像的原理, 采用特定的 反演算法 ，得到活的物体小动物体 内发光光源的精确位置信息。目前, BLT的光源定位和生物组织光学特性参数的反演问题 已经成为国内外在体生物光学成像研究的重点和难点之一, 但还限于于实验室研究阶段, 没有达到临床实验的阶段, 所 以尚未有成熟的成像系统。在体光纤成像记录能够聚集在特定的组织系统。湖州神经元单光纤成像技术

在体光纤成像记录的根本缺点是光的组织穿透率低。由于吸收和散射，荧光发射的可见光谱中的光只能穿透几百微米的组织。这个问题限制了大多数光学方法在小动物或人类表面结构研究中的应用。使用近红外光谱能够提高信号的组织穿透能力，并能降低了组织的自体荧光。在体外将荧光探针与细胞共孵育后注射入体内，用规定波长的光激发荧光探针，较后用高灵敏度的摄像机记录发射的光子。有机荧光染料价格低廉，毒性可控，但当观察时间较长时，容易发生光漂白。量子点具有高度的光稳定性，有望代替传统荧光探针。但由于大多数量子点都含有镉，限制了其临床应用。珠海在体实时监测神经元活动记录技术服务将使科学家能够控制在体光纤成像记录。

在体生物发光成像不需要外部光源激发, 自发荧光少，而在体光纤成像记录，需要特定波长的外部激发光源激发, 自发荧光较多, 故前者比后者灵敏度更高, 在体生物发光断层成像原型系统, 主要由 CCD相机、 固定小动物的支架、 控制装置 （使支架水平运动、 垂直运动或旋转） 、完全密闭的不透光的成像暗箱等组成。将小动物麻醉后固定在支架上, 并置于成像暗箱中, 由控制装置带动支架沿水平方向运动、 垂直方向运动或旋转, 利用相机从多个不同角度和位置对活的物体小动物的生物发光现象进行投影成像 然后将采集到的数据信息传输到计算机中, 并采用特定的图像重建算法定位动物体内的发光光源, 得到活的物体动物体内发光光源的精确位置信息。

在体光纤成像记录系统还包括：首先一物镜；所述首先一物镜位于所述第三多模光纤与所述待成像物体之间；所述首先一物镜与所述第三多模光纤的另一端之间的距离为所述首先一物镜的工作距离，所述首先一物镜与所述待成像物体之间的距离为所述首先一物镜的工作距离，所述首先一物镜位于所述第三多模光纤的光束出射方向的正前方，且所述首先一物镜的中心点与所述第三多模光纤的中心点位于同一直线，以使所述首先一光束经过所述第三多模光纤照射至所述首先一物镜；首先一物镜，用于对所述首先一光束进行放大，将放大后的首先一光束照射至所述待成像物体；放大后的首先一光束经所述待成像物体反射，得到所述第二光束，以使所述第二光束照射至所述首先一物镜。在体生物发光成像不需要外部光源激发。

在体光纤成像记录技术的问世，为解决这一困难提供了广阔的空间，将使药物在临床前研究中通过利用在体光纤成像记录的方法，获得更具体的分子或基因述水平的数据，这是用传统的方法无法了解的领域，所以在体光纤成像记录将对新药研究的模式带来**性变革。其次，在转基因动物、动物基因打靶或制药研究过程中，在体光纤成像记录能对动物的性状进行查看检测，对表型进行直接观测和（定量）分析。免疫学与干细胞研究 ，细胞凋零 ，病理机制及病毒研究 ，基因表达和蛋白质之间相互作用 ，转基因动物模型构建 ，药效评估 ，药物甄选与预临床检验 ，药物配方与剂量管理 ，坏掉的学应用 ，生物光子学检测 ，食品监督与环境监督等。现有技术中的在体光纤成像记录系统仍包含多根多模光纤。湖州神经元单光纤成像技术

在体光纤成像记录硬件也有助于保证较高的成像质量。湖州神经元单光纤成像技术

小动物在体光纤成像记录可根据实验需要通过尾静脉注射、皮下移植、原位移植等方法接种已标记的细胞或组织。在建模时应认真考虑实验目的和选择荧光标记，如标记荧光波长短，则穿透效率不高，建模时不宜接种深部脏器和观察体内转移，但可以观察皮下瘤和解剖后脏器直接成像。深部脏器和体内转移的观察大多选用荧光素酶标记。小鼠经过常规麻醉（气麻、针麻皆可）后放入成像暗箱平台，软件控制平台的升降到一个合适的视野，自动开启照明灯（明场）拍摄首先一次背景图。下一步，自动关闭照明灯，在没有外界光源的条件下（暗场）拍摄由小鼠体内发出的特异光子。明场与暗场的背景图叠加后可以直观的显示动物体内特异光子的部位和强度，完成成像操作。值得注意的是荧光成像应选择合适的激发和发射滤片，生物发光则需要成像前体内注射底物激发发光。湖州神经元单光纤成像技术