AKT免疫组化IHC

时间:2023年09月03日 来源:

免疫荧光间接法测抗体实验步骤:滴加0.01mol/L,pH7.4的PBS于已知抗原标本片,10min后弃去,使标本片保持一定湿度。滴加以0.01mol/L,pH7.4的PBS适当稀释的待检抗体标本,覆盖已知抗原标本片。将玻片置于有盖搪瓷盒内,37℃保温30min。取出玻片,置于玻片架上,先用0.01mol/L,pH7.4的PBS冲洗1-2次,然后按顺序过0.01mol/L,pH7.4的PBS三缸浸泡,每缸5min,不时振荡。取出玻片,用滤纸吸去多余水分,但不使标本干燥,滴加一滴一定稀释度的荧光标记的抗人球蛋白抗体。将玻片平放在有盖搪瓷盒内,37℃保温30min。重复操作3。取出玻片,用滤纸吸去多余水分,滴加一滴缓冲甘油,再覆以盖玻片。荧光显微镜高倍视野下观察,结果判定同直接法。荧光抗原法是利用已知的荧光标记物来追踪或检查相应抗体的方法。AKT免疫组化IHC

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检测复杂的生物学结构需要较高清晰度的荧光信号,并将荧光信号从背景噪声中分离开来。标准的免疫荧光标记很少能够获得较佳信噪比的成像效果。获得良好图片和较佳的可供发表的高质量图像之间的差异就在于:需要精细调整样品信号达到峰值特异性、高清晰度和较佳放大倍数。虽然荧光基团是进行高质量细胞成像的较佳选择,但不可避免地也极易发生光漂白,即荧光信号的光化学降解或衰退。任何光敏感度的下降都可能导致数据出现偏差,产生假性结果。抗淬灭封片剂可以保护荧光标记蛋白的稳定性,维持数周乃至数月的图像信号完整度。AKT免疫组化IHC免疫荧光技术可以用于研究细胞内蛋白质的亚细胞定位。

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细胞的固定及免疫荧光:注意事项:(1)取细胞爬片时,动作应轻柔,防止将细胞爬片夹碎,影响实验进程。(2)种细胞过程中,要注意将细胞轻柔混匀,“八”字或者“十”字形摇晃,防止细胞局部生长过密。(3)稀释、加二抗(荧光抗体)及此后的洗涤过程中注意避光。(4)细胞爬片进行免疫荧光之后,需要尽快拍照,防止免疫荧光淬灭。或者放于暗盒内,暂时保存于4度冰箱,尽快拍照。(5)在进行荧光显微镜拍照时,要根据荧光抗体选择合适的激发光源。PI/DAPI能将凋亡和未凋亡的细胞都染成红色/蓝色,只在凋亡的细胞核中才有FITC-12-dUTP掺入而定位的绿色荧光。

细胞免疫荧光步骤对大家来说一定是很陌生的,他是一种抗原抗体反应,好像对我们来说他显得很遥远的样子,因为我们并不了解他能做什么,通过这种技术可以让我们对抗原或抗体的性质、定位一次来分析出更多的数据。细胞免疫荧光,这对很多人来说都是一次听说这个东西,也不知道他对我们会有什么好处与坏处,科学研究就是这样子的,普通老百姓是不会明白其中的道理的,但是这些研究也是确实的在我们的生活中取得了成果,能够让大家过的更加舒适。免疫荧光技术可以通过荧光显微镜观察样品中的荧光信号,从而确定目标分子的存在和位置。

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细胞免疫荧光实验注意事项:非特异性染色:是否灭活内源性过氧化物酶;孵育过程中干片;抗原热修复过度。染色过深:一抗浓度过高;染色试浓度过高或孵育时间过长;染色剂浓度过高或孵育时间过长。通常实验室先固定细胞再进行通透,但若检测抗原是水不溶性蛋白,可先通透再固定,这样可以通过通透去除一些水溶性蛋白,进而可降低免疫荧光背景和非特异性信号;建议设阴性对照组,消除由于抗体非特异性结合而产生的背景染色;选择醛类固定液时,保持其新鲜度,较好现配现用,使用不新鲜的醛类固定液自发荧光背景会升高。荧光抗体法是利用荧光标记的抗体来追踪或检查相应抗原的方法。多重免疫荧光染色

免疫荧光技术可以用于研究细胞分裂和细胞周期。AKT免疫组化IHC

荧光标记二抗的选择普遍;与使用荧光素结合一抗的检测相比,成本较低。间接免疫荧光的缺点:由于需要具有两种不同物种反应性的两种抗体,因此物种交叉反应性问题增加;与直接免疫荧光相比,时间更长(操作步骤更多)。间接免疫荧光的优点:通过增加能够与一抗结合的二抗数量进行信号放大;与直接免疫荧光相比,通过信号放大提高检测灵敏度;荧光标记二抗的选择普遍;与使用荧光素结合一抗的检测相比,成本较低。间接免疫荧光的缺点:由于需要具有两种不同物种反应性的两种抗体,因此物种交叉反应性问题增加;与直接免疫荧光相比,时间更长(操作步骤更多)。AKT免疫组化IHC

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