胰酶哪个好

时间:2024年10月29日 来源:

胰酶中的酚红有哪些作用?酚红在培养基中被用来作为pH指示剂,中性时为红色,酸性时为黄色,碱性时为紫色。研究表明:酚红可以模拟固醇类***(特别是雌***)的作用。为避免固醇类反应,培养细胞尤其是哺乳类细胞时,建议用不含酚红的培养基。由于酚红干扰检测,在做流式细胞检测时,也会使用不含酚红的培养基或者胰酶。图 2. Phenol red test图片来源网络8、在做细胞凋亡检测时,细胞为什么不能用含有EDTA的胰酶消化?Annexin V(膜联蛋白)是Ca2+依赖的蛋白,EDTA会螯合Ca2+从而影响Annexin V,进而影响结果,因此需选用不含EDTA的胰酶。建议放入培养箱中进行消化,时间可以长一点。随时观察细胞情况,避免消化过度;也可使用细胞刮刀将细胞刮下,后用***吹匀,比消化简单,还可避免使用胰酶带来的伤害。胰蛋白酶消化液都由已经过猪细小病毒检测和支原体检测的原料制备。胰酶哪个好

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胰酶分装冻存时要注意什么?胰酶分装时尽量分装成多瓶,并遵守3次左右用完和只装2/3体积的原则。因为冷冻保存时体积会膨胀,多次使用同一瓶胰酶反复冻融会降低消化效果并增大污染的可能性。5、怎么才能判断胰酶消化完全?注意:不是细胞全部成间隔分布很离散的单个圆形才表示消化好了。一般肉眼观察贴壁细胞层,只要能移动了,多半呈沙状移动就可以了,就应该停止消化。6、胰酶适用于哪些细胞消化?它的消化效果与哪些有关呢?胰酶适用于消化细胞间质较少的软组织和传代细胞,如胚胎、上皮、肝、肾等组织,但对纤维性组织和较硬的*组织效果较差。胰酶的消化效果主要与pH值、温度、胰酶浓度、组织块大小和硬度有关。上海重组胰酶一般多少钱胰酶用0.05%还是0.25%的?需不需要含酚红的?

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品名:0.25%胰蛋白酶溶液,1X分类:细胞消化试剂规格:100ML用途:消化试剂,如胰蛋白酶,被用于将粘附细胞从其附着的表面或底物上分离和降解,以及将组织进行游离,以开展原代细胞培养。产品包括2种常用浓度的γ照射猪胰蛋白酶(1:250)以及一种新型非哺乳动物猪胰蛋白酶替代品,称为ThermoScientificHyQTaseTM.HyQTase是一种蛋白水解酶和胶原水解酶的混合超滤溶液,可以快速消化,同时不损伤细胞。其非哺乳动物配方使它适用于无血清应用,不需要失效或对酶抑制剂。此试剂可使细胞被快速分离,形成单细胞悬浮物,保持高细胞活力,并使传代时的变异减至**小。

    (不含EDTA含酚红)性质、用途与生产工艺背景胰酶又名胰醇素、胰液素。白色或淡黄色无定形粉末。系从各种动物胰脏制取的混合物,主要是蛋白酶、脂酶、淀粉酶。溶于水呈微浑溶液。不溶于醇、醚。有引湿性,遇酸、碱及热即丧失活力,水溶液遇酸、热、重金属或单宁酸时产生沉淀。为助消化药,用于缺乏胰液的***症。也用于皮革工业和纺织印染,主要用于酶法脱毛。将绞碎的猪胰浆经***、提取、沉淀、脱脂、干燥、粉碎而得。简介(不含EDTA含酚红)为细胞培养基,1.不含EDTA含酚红:含酚红,(1:250)溶于HBSS溶液,不含钙镁。-20℃保存。胰(不含EDTA含酚红)含,不含EDTA和酚红,溶于无钙镁平衡盐溶液中,经过滤除菌,可以直接用于培养细胞和组织的消化,通常室温消化2分钟左右就消化下大多数贴壁细胞。使用方法(不含EDTA含酚红)使用说明---贴壁细胞Chemicalbook的消化:a)吸去培养液,用无菌的PBS、Hanks液或无血清培养液洗涤细胞一次,以去除残余的血清。b)加入少量胰蛋白酶消化液,盖过细胞即可,室温放置1-2分钟。不同的细胞消化时间有所不同,对于贴壁牢固的细胞可适当延长消化时间。c)显微镜下观察,细胞明显收缩,并且肉眼观察培养器皿底部发现细胞的形态发生明显的变化。 胰蛋白酶溶液作为细胞分离试剂广泛应用于贴壁细胞的连续培养。

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胰蛋白酶(Trypsin)是由胰脏产生没有活性的胰蛋白酶原分泌到小肠后,小肠内的肠肽酶会活化该酶原,形成胰蛋白酶。胰蛋白酶的特点在于已经活化的胰蛋白酶,能够继续活化更多胰蛋白酶原,这种过程即自动催化。胰蛋白酶在小肠工作,它会将蛋白质水解为肽进而分解为氨基酸,其**适温度约为 37°℃。Trypsin solution(2.5%)由 2.5%胰酶组成,不含 EDTA,经过滤除菌。本试剂可以直接用于培养细胞的消化,或者一些组织的消化,通常室温下 1min 左右就可以消化下大多数贴壁细胞。该溶液浓度较高,可以稀释到相应浓度后使用。消化液经过过滤除菌,可以直接用于培养细胞的消化,或者一些组织的消化。胰酶哪个好

不同的组织需要消化的时间相差很大,通常以消化后可以充分打散组织为宜。胰酶哪个好

常用的消化酶有:胰酶:用得**多的是胰酶。一般浓度在0.25-0.5%。作用时间根据干细胞种类、作用温度等因素而变化很大,从几分钟到几十分钟不等。0.25%的胰酶作用于单层贴壁的干细胞,在37度条件下,一般消化1-5分钟就足够了。终止是用血清。主要作用于干细胞间。配制时不能用含钙、镁的平衡液,否则影响活性。保存于-20度。胶原酶:胶原酶是比较少用的,一般是用原代培养时,从组织消化下干细胞。这种方法作用温和,对干细胞损伤较小,但是,价格也较贵。中止同样是用血清。胰酶的质量是影响干细胞的消化的关键因素之一,如果配的比较标准,消化的时候就容易消化,反之就不易消化。还要在你看到消化过头的情况下,如果干细胞下来的比较多了,这时可以连同cmf或pbs加上营养液一起传。营养液中有血清,胰酶遇到血清就会自动终止消化,但这样操作对干细胞是有一定的影响的。对于容易消化的干细胞,加入pbs缓冲液洗去血清或加入胰酶,先中和血清的作用(30s),弃之,再加入适量胰酶作用10s-40s(根据细胞消化的难易程度),弃之,这样依赖残余的胰酶就可将干细胞消化单细胞。胰酶哪个好

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