河北30K超滤离心管推荐

离心过滤器具有快速超过滤功能，能够达到较高的浓缩系数，易于从稀释液和复杂的样本组合进行浓缩液回收。其竖式设计以及可用的滤膜表面积能提供快速的样本处理和较高的样本回收率(通常大于90%稀薄的初始溶液)，并能进行80倍浓缩。典型的处理时间为15至60分钟，这取决于标称分子量限值(NMWL)。竖式设计将溶质极化和之后造成的滤膜结垢降至较低，过滤装置中的物理止滤点防止过滤器旋转过度使样本干燥和造成样本损失。浓缩液用移液管从过滤器的样本槽中收集，而超过滤滤出液则收集到所提供的离心管中。该装置可在摆桶或定角转子中旋转。装置未经消毒，只供—次使用。超滤离心管的选择需要根据被过滤溶液或混合物的性质和所需的纯度和体积来确定。河北30K超滤离心管推荐

超滤离心管的原理：根据标称分子量限值(NMWL)的不同，典型处理时间为10-30分钟。超滤膜的垂直设计也较大程度降低了溶质极化造成的滤膜结垢;Chemicalbook死体积设计能有效防止过度离心使样本干掉而造成样本损失。收集滤出液后，浓缩样本(截留部分)可通过一个简便的倒置(上下反转)离心步骤而实现高效回收。超滤离心管的应用：1）浓缩含有抗原、抗体、酶、核酸（DNA/RNA样本，单链或双链）、噬菌体等微生物样本2）纯化组织培养提取液或细胞裂解液中的大分子成分，去除反应液中的引物、接头或分子标记，在HPLC前去除蛋白质。3）除盐，缓冲液更换，或渗滤。河北30K超滤离心管推荐使用超滤离心管时要注意控制转速，以避免过度旋转导致超滤膜损坏或溢出样品。

超滤离心管从细胞培养上清液中浓缩蛋白，在园子里找到一些关于浓缩蛋白的一些帖子，但还有些问题还是向园子里的大虾请教一下。我们定的是 15ml规格的管子，不知道有没有谁以前做过的，有关于转速，时间给一些建议，另外细胞上清液离心前是否需要什么预处理？离心之后回收蛋白时怎么尽量减少损失？如果要把管子重复利用，NaoH清洗后，如何在20%的乙醇中保存？是将其浸到乙醇中防于4度，还是在管子中灌入乙醇？我用过5ml的管子，当时使用的转速是4000rpm 8min，可以把5ml的样品液浓缩到约200ul，这只供参考，具体情况还要由您的样品决定。我保存5ml管子的方法是把内管取出，浸泡于装有20％乙醇的烧杯中。四度保存。

超滤离心管关于回收率的疑问？一般对浓度大于0.1mg/ml的溶质进行回收，回收率在90%以上。通常，样品损失是由于滤膜表面和料管表面的非特异性吸附造成的。为了获得较高的回收率，所选滤膜的截留率约为目标蛋白的1/3。超滤膜是一种非对称膜，其孔径呈正态分布。在高压离心下也可能发生泄漏，在这种情况下蛋白质可能会发生变形。因此，截留孔径越小，流速越慢，但回收率会更高。浓缩过程中有蛋白质沉淀，如何处理？如果蛋白质浓缩过快或过多，都可能造成蛋白质沉淀，浓缩后的蛋白质之后浓度不宜过高；对于对浓缩速度敏感、易沉淀的蛋白质，建议改进方法如下：1）降低离心速度，2）使用截留分子量较大的超滤膜3) 吹吸浓缩管，然后离心。超滤离心管可以用于分离提取海洋样品中的藻类、细菌等微生物群落，以进行海洋生态学研究。

离心过程中注意是否发生蛋白沉淀，导致堵管。若发生沉淀，要确定沉淀的具体原因，是蛋白浓度过高还是Buffer不合适；前者可用多根超滤管同时超滤，降低浓度的办法解决，后者的方法是换不同的缓冲溶液，直到蛋白不发生沉淀为止。用以浓缩蛋白，如果要换Buffer，在总蛋白液浓缩至1ml左右的时候，轻轻加入新的Buffer（经0.22um超滤膜超滤），再浓缩至1ml左右，连续三次，之后一次的浓缩终体积根据需要的蛋白浓度而定，一般不多于500ul，也有浓缩至200ul以内的情况。按照每次至少10倍左右的体积浓缩算，三次达到1000倍以上，基本上可以达到换buffer的目的。超滤离心管还可用于检测食品样品中的致病菌、重金属等污染物，并进行食品安全监测和控制。河北30K超滤离心管推荐

使用超滤离心管时应注意遵循正确的操作程序和实验室规范，并定期进行设备维护和保养。河北30K超滤离心管推荐

我们通常会以1/3到1/6甚至更低的区间来选择超滤管的孔径，通常更小的孔径会使回收率提高但是超滤的时间也会比较长。一定范围内，超滤的回收率和速度是一对矛盾体，因此可以通过优化孔径的选择，在回收率可以接受的条件下选择较大的孔径，来提高超滤的速度。低温如< 10 ℃，液体的粘度会增加，流动性会降低，因此液体的跨膜速率也会降低。适当提高超滤温度，往往能够提高超滤的速度。有些客户需要做几十ml到几百ml样品的浓缩或者缓冲液置换，但是却使用1支或几支15ml的超滤管反复离心来完成操作，这样必然造成时间上的浪费。怎么办？一定要挑选适合处理量的产品，减少不必要的反复离心从而提升超滤的效率。河北30K超滤离心管推荐