北京细胞支原体检测如何取样

时间:2024年06月14日 来源:

支原体检测中的PCR法和LAMP方法各有其优势和劣势,以下是两种方法的比较:

PCR法
优势:
1.高灵敏度:PCR法可以扩增支原体DNA,具有很高的灵敏度。
2.操作简便:PCR操作相对简单,结果准确,速度快,通常3个小时左右即可得到结果。
3.可靠性:PCR法已成为日常细胞培养维护的可靠方法,是细胞样本库保护细胞的方法。
劣势:
1. 样品量需求:相对于某些快速检测方法,PCR可能需要较多的样品量。
2. 检测周期:尽管PCR法相对快速,但在某些情况下,检测周期可能较长。
LAMP法
优势:
1. 设备简单:只需要一个稳定的恒温环境,如恒温水浴或热拟温器,不需要复杂的温度控制设备。
2. 高特异性:LAMP技术采用多个特异性引物,提供了较高的特异性。
3. 结果可视化:LAMP扩增产物可形成肉眼观察的颜色产物,有助于直接观察扩增结果。
劣势:
1. 引物设计复杂:需要设计多个引物,包括外部引物、内部引物和环引物,引物设计较为复杂。
2. 避免污染:由于没有封闭系统,避免污染造成的假阳性是一个问题。
支原体检测方法LAMP法的应用。北京细胞支原体检测如何取样

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目前有 210 +种不同种类的支原体分布于人类、动物、昆虫和植物中,其中 20 +种在细胞培养中被发现为污染物。支原体在实验室中的传播来源多种多样,主要来源包括实验室人员、胎牛血清(FBS)或新生牛血清(NBS)、以及由猪来源的胰蛋白酶溶液。此外,来自其他实验室或商业供应商的细胞培养物、培养基、污染的试剂;非无菌供应品、培养基和溶液;实验室人员;培养箱;液氮;空气颗粒和气溶胶;抗*素的过度使用;细胞培养器皿的不正确密封;以及其他的支原体细胞培养物等都可能成为支原体的传播途径。
上海细胞培养支原体去除试剂支原体去除的实验步骤?

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支原体预防的实验步骤主要包括以下几个方面:
1. 无菌操作技术:在细胞培养过程中,严格遵守无菌操作规程,包括穿戴适当的实验服、手套,使用无菌工具和耗材。
2. 环境控制:保持实验室环境清洁,定期消毒工作台和实验室表面,使用层流罩或生物安全柜进行细胞操作。
3. 细胞培养基和试剂的无菌过滤:所有加入到细胞培养基中的试剂和补充物,如血清、抗*素等,都应通过无菌过滤以去除支原体。
4. 细胞培养基和试剂的检测:在添加到细胞培养物之前,对新的细胞培养基和试剂进行支原体检测,以确保它们没有被污染。
5. 定期检测:即使采取了预防措施,也应定期对细胞培养物进行支原体检测,以确保及时发现并处理潜在的污染。
6. 避免交叉污染:避免从一个细胞培养物到另一个的交叉污染,使用的移液器和工具,避免在不同细胞培养物之间重复使用。
7. 细胞培养物的筛选:使用已知无支原体污染的细胞株进行实验,或者在开始实验前对细胞株进行筛选。
8. 使用预防性试剂:在某些情况下,可以在细胞培养过程中添加特定的预防性试剂,如支原体预防剂,以降低污染风险。

支原体是细胞外生存的 小微生物,是一类缺乏细胞壁的原核细胞型微生物,大小一般在0.2~0.5um之间,呈高度多形性,有球形、杆形、丝形、分枝状等多种态。
1、支原体存在于我们周围,他可能就如尘埃一样存在于我们的环境中
2、可透过一般的滤膜,所以不要寄希望于过滤可以清楚支原体污染的液体
支原体对培养细胞的污染发生率高,据估计平均发生率在60%左右。同时又非常隐秘,早期不容易被发现,除非用特异性和灵敏度都非常高的检测试剂盒。支原体因为个头小,能穿过0.22微米滤器,并且在实验室内会潜在的扩散。支原体污染使得用被污染的细胞样本做的实验完全失去意义和价值。
如何检测新鲜的培养基是否有支原体污染?

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支原体的预防可通过以下方式:
1. 控制污染源:通过定期检测和去除细胞培养中的支原体污染,确保细胞培养体系内无支原体存在,从而获得准确有效的实验数据。
2. 改善无菌操作技术:通过提高实验人员的操作技术和意识,避免在细胞培养过程中引入支原体污染。
3. 使用无菌设备和耗材:使用无菌的细胞培养设备和耗材,如无菌培养基、血清等,减少支原体污染的风险。
4. 定期消毒和清洁:对实验室环境进行定期的消毒和清洁,包括工作台、培养箱等,以减少支原体的潜在污染。
5. 使用预防性试剂:使用专门针对支原体的预防性试剂,如加入细胞培养基中的预防剂、超净台喷雾、水浴锅预防和细胞培养箱水盘预防等,以预防支原体污染。
6. 提高实验室人员对支原体污染的认识:通过科普教育和培训,提高实验室人员对支原体污染的认识和预防意识。
7. 建立严格的实验室管理规程:制定并执行严格的实验室管理规程,包括样本处理、废物处理、设备维护等,以降低支原体污染的风险。
支原体检测方法qPCR法的应用。温州细胞培养支原体检测服务

支原体污染源和主要类型?北京细胞支原体检测如何取样

LAMP法,即环介导等温扩增技术(Loop-mediated isothermal amplification),是一种在恒定温度下进行的核酸扩增方法。它由日本学者Notomi于2000年开发。LAMP法检测有以下特性:
快速高效:LAMP技术可以在1小时内把几拷贝的目的序列迅速扩增到10^9^~10^10^拷贝,扩增效率高。
简便性:LAMP技术不需要进行模板的预变性,减少了PCR技术升降温带来的影响以及对昂贵、精密实验仪器的要求,同时扩增效率高,可以在较短时间内完成检测。
LAMP法因其快速、高效、特异、灵敏和经济等优点,已经应用于病原菌、寄生虫、病毒、疾病和转基因产品检测等领域,并且还将广泛应用于临床诊断、环境监测、食源安全等领域,具有更为广阔的发展应用前景。
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