斑马鱼电生理实验
在饲养体系里,科研人员们会准确调控水的温度、电导率等参数,并设定固定的日常光照时刻,以保证斑马鱼能在实验室内大规模繁育,确保实验的有序进行。仪器设备实验室除了先进的饲养体系,还具有了先进的正置荧光显微镜、荧光定量PCR仪、荧光酶标仪、斑马鱼行为分析仪等检测设备。斑马鱼成鱼体长5cm左右,其胚胎通明,在受精72h后完结孵化,并在孵出后3个月内性成熟。成年斑马鱼的繁衍周期短(一般7d左右),若条件适宜,成年雌性斑马鱼可定期产卵(每次200~300个)。在斑马鱼的前期胚胎及幼体的发育过程中,尚无性别分解,原始性腺都是相同的且具有双向发育的潜能,易受环境(温度、光照、pH值等)因素的影响而改变其遗传性别。斑马鱼试验都需求哪些设备?斑马鱼电生理实验
保持首先,斑马鱼非常强壮,易于维护。由于它们是在池塘中自然发现的,它们的理想条件可以很容易地复制。他们也很便宜;然而,它们确实需要比其他模型生物如苍蝇更多的空间。这种模式也是脊椎动物,这使它优于其他模式。生殖斑马鱼的繁殖力非常高,每周产数百个卵。他们也有很短的生成时间,这意味着科学家有一个永无止境的供应这种模式。这缩短了整个实验过程,并且在突变体生产中特别有用。另一个优点是斑马鱼卵是从外部发育的,科学家可以很容易地研究它们**初的发育过程。这是一个优于其他模型,如小鼠,发展内部,因此阻碍视觉调查。斑马鱼tctg测量方法斑马鱼在工业实验室中常被用作毒理学检验。
斑马鱼模型发展历史和应用现状2015年10月10日浏览量:2384次评论(0)来源:杭州环特发布者:杭州环特斑马鱼早在20世纪30年代就在欧洲用于环境检测研究,但普遍认为斑马鱼正式作为一种模式生物应用于科学研究始于1972年,美国GeorgeStreisinge教授在该年开始了斑马鱼发育生物学研究和模式动物建系工作。1989年,GeorgeStreisinge教授的同事MonteWesterfield教授出版***本斑马鱼研究专著TheZebrafishBook***版。1994年,“斑马鱼发育和遗传”主题会议在冷泉港实验室召开,斑马鱼模型开始被学术界接受。1998年,发生了多件斑马鱼技术发展的大事件,美国国立卫生研究院(NIH)在该年开始大力度支持斑马鱼基因组资源开发,全球较早斑马鱼模式生物数据库ZFIN在该年成立,而全球***家斑马鱼药物研发服务外包公司也是在这一年成立。2000年,欧洲Sanger中心启动斑马鱼全基因组测序工作,并于2年后发布了***个斑马鱼全基因组序列拼接ZV1。2004年,斑马鱼国际资源中心(ZIRC)在俄勒冈大学成立。2009年,斑马鱼药物毒理学评价技术***通过FDA和EMA的GLP认证。
斑马鱼作为免疫学新模式生物的优点在于:(1)与传统的免疫学模式生物——小鼠相比,斑马鱼有体型小,子代数量多,培育要求低,易于养殖,饲养成本低,便于开展大规模研究。(2)斑马鱼个体发育过程是在全透明状态下完成,使得整个心血管系统的发育过程能十分完整的被观察。特别是免疫系统个体发育的相关资料,是无法从小鼠上所进行的实验中轻易获得的。(3)先期对斑马鱼的遗传学研究积累的丰富突变库也为研究免疫相关基因的功能提供了条件。(4)在已知生物中,鱼类是**早具备获得性免疫系统的纲。物质对淡水鱼 (斑马鱼) 急性毒性测定方法。
斑马鱼作为模式生物的优势1、斑马鱼与哺乳动物生物结构与生理功能高度相似,实验结果可比性强。2、斑马鱼与人类基因同源性高达85%,信号传导通路基本近似。3、斑马鱼幼鱼通体透明,可直接观察多个组织和。4、实验周期短,通常实验1-5天能够完成。5、实验费用低,为鼠类实验费用的1/10到1/100。6、体积小,易观察,可实现高通量、高内涵及自动化分析。7、繁殖能力强,每对斑马鱼一次可产150-300枚,单组实验样本数量多。8、实验所需样品量小,毫克级样品即可完成实验。9、符合3R(替代、减少、优化)原则。10、获得欧美监管部门和跨国药食企业认可。斑马鱼在化学品安全性点评与环境毒理学点评范畴的应用也已经十分广。杭州环特生物有限公司
斑马鱼药物毒理学评价技术。斑马鱼电生理实验
报告基因选用GFP或RFP,**小启动子来自斑马鱼gata2基因;将上述载体与体外转录得到的Tol2转座酶的mRNA共同注射到斑马鱼的单细胞受精卵中,受精卵长大后成为founder;Founder外交(out-cross)得到F1代胚胎,从中挑选出对于报告基因具有组织特异性表达模式的胚胎,拍照记录后分类培养;F1长大后通过linker-mediatedPCR的方法鉴定对应于GFP(或RFP)表达图式的Tol2插入位点,并通过与已知基因组数据比较,对插入位点进行定位与分析;通过外交纯化得到转基因鱼,直至得到只含有单个插入品系的转基因鱼。斑马鱼电生理实验
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