MEL-1A-R免疫组化

免疫荧光间接法测抗体实验注意事项：1）荧光染色后一般在1h内完成观察，或于4℃保存4h，时间过长，会使荧光减弱。2）每次试验时，需设置以下三种对照：①阳性对照：阳性血清+荧光标记物②阴性对照：阴性血清+荧光标记物③荧光标记物对照：PBS+荧光标记物3.已知抗原标本片需在操作的各个步骤中，始终保持湿润，避免干燥。4.所滴加的待检抗体标本或荧光标记物，应始终保持在已知抗原标本片上，避免因放置不平使液体流失，从而造成非特异性荧光染色。免疫荧光技术可以用于研究药物的靶点和作用机制。MEL-1A-R免疫组化

免疫荧光间接法测抗体实验步骤：滴加0.01mol/L，pH7.4的PBS于已知抗原标本片，10min后弃去，使标本片保持一定湿度。滴加以0.01mol/L，pH7.4的PBS适当稀释的待检抗体标本，覆盖已知抗原标本片。将玻片置于有盖搪瓷盒内，37℃保温30min。取出玻片，置于玻片架上，先用0.01mol/L，pH7.4的PBS冲洗1-2次，然后按顺序过0.01mol/L，pH7.4的PBS三缸浸泡，每缸5min，不时振荡。取出玻片，用滤纸吸去多余水分，但不使标本干燥，滴加一滴一定稀释度的荧光标记的抗人球蛋白抗体。将玻片平放在有盖搪瓷盒内，37℃保温30min。重复操作3。取出玻片，用滤纸吸去多余水分，滴加一滴缓冲甘油，再覆以盖玻片。荧光显微镜高倍视野下观察，结果判定同直接法。MEL-1A-R免疫组化免疫荧光技术可以用于研究细胞内蛋白质的亚细胞定位。

免疫荧光的原理和类型：免疫荧光利用荧光分子或荧光团在一定波长（分子的吸收光谱）下吸收光子的特性，经过短暂的间隔（发射光谱）后以较高的波长发射光子，并伴随能量损失。发射的荧光可通过显微镜观察到。荧光团可以通过可见光或紫外光激发。具有高光稳定性和荧光量子产率的荧光染料可在市场上购买，其激发较大值跨越从400到>700nm的波长范围。它们不会损伤活细胞，可安全用于生物制剂。在进行免疫荧光检测时，首先对细胞或组织进行固定和透化处理。进行免疫染色时，荧光团与目标抗原的抗体结合，然后使用成像显微镜观察荧光信号。根据使用的抗体和所需的信号扩增，免疫荧光可分为直接和间接两种类型。

免疫学的基本反应是抗原-抗体反应。由于抗原抗体反应具有高度的特异性，所以当抗原抗体发生反应时，只要知道其中的一个因素，就可以查出另一个因素。免疫荧光技术就是将不影响抗原抗体活性的荧光色素标记在抗体（或抗原）上，与其相应的抗原（或抗体）结合后，在荧光显微镜下呈现一种特异性荧光反应。在此基础上又分为两种方法：直接法和间接法。直接法：将标记的特异性荧光抗体直接加到抗原上，经过一定时间反应，即可结合并显色。间接法：先用抗原的抗体（一抗）与抗原反应结合，再用荧光标记的二抗（一抗的抗体）与抗原反应，形成抗体-抗原-抗体复合物。使用已知荧光抗原标记物质来检查相应抗体的方法被称为荧光抗原技术。

zo-1的免疫荧光，步骤如下：1.细胞在盖片上生长融合到95%-100%时，从孵箱中取出。2.用预温的1×PBS洗3次，每次10分钟。3.4%的甲醛室温固定20-30分钟。4.1×PBS洗3次，每次10分钟。5.0.2%TritonX-100透化2-5分钟。6.1×PBS洗3次，每次10分钟。7.5%BSA室温封闭30分钟。8.加一抗（用1%BSA稀释）放在湿盒里，4度过夜。9.1×PBS洗3次，每次10分钟。10.加二抗(用1%BSA稀释)30分钟，闭光。11.1×PBS洗3次，每次10分钟。12.95%甘油封片。注：4%甲醛，0.2%Triton，5%BSA均用1×PBS稀释。免疫荧光技术利用荧光染料标记的抗体与目标分子结合，从而实现可视化检测。OPN免疫荧光IF

荧光抗体技术具有高灵敏度和高特异性，可以实现精确的免疫检测。MEL-1A-R免疫组化

荧光的猝灭：荧光分子的辐射能力在受到激发光较长时间的照射后会减弱甚至猝灭，这是由于激发态分子的电子不能回复到基态，所吸收的能量无法以荧光的形式发射。一些化合物有天然的荧光猝灭作用而被用作猝灭剂，以消除不需用的荧光。因此荧光物质的保存应注意避免光（特别是紫外光）的直接照射和与其他化合物的接触。在荧光抗体技术中常用一些非荧的色素物质如亚甲蓝、碱性复红。伊文思蓝或低浓度的过锰酸钾、碘溶液等对标本进行得当复染，以减弱非特异性荧光本质，使特异荧光更突出显示。MEL-1A-R免疫组化