exosome

寻找肝脏疾病的新型分子标志物一直是研究热点，也是难点。不同肝脏疾病中，细胞分泌的外泌体所携带的核酸和蛋白组分之间存在差异。这些不同生理状态下外泌体所携带的特异性蛋白分子、miRNA等，是潜在的分子诊断和预后标志物。肝细胞患者中，血清外泌体miR-21、-18a、-221、-222和miR-224明显上升，miR-101、-106b、-122和miR-195明显下降。而HCC患者肝移植复发后，血清外泌体miR-718水平明显下降。除外泌体外，微泡也有可能作为新型标志物，研究发现HCV患病者中CD4+和CD8+T细胞来源的微泡含量上升；而肝脏干细胞分泌的微泡中多种miRNAs上调。建立记录各论文实验条件的数据库也可作为规避混乱的方法之一。exosome

利用抗ai症药物进行中流zhiliao是抑制中流的一个重要方法，不过目前抗ai症药物的运载存在着种种挑战，主要体现在以下几点:(1)抗ai症药物的疏水性;(2)抗ai症药物的毒性以及非靶向性;(3)易被人体清chu，体内循环的半衰期很短等。采用外泌体运输抗ai症药物，可以提高药物体系的水溶性，降低药物对人体的毒性以及避免被网状内皮系统捕捉从而延长其循环时间。近期，两种抗ai症药物———紫杉醇(PTX)和阿霉素(DOX)已经成功被载入外泌体中，并对其抗中流作用进行了研究。血液外泌体分离步骤神经细胞来源的外泌体含有与神经退行性疾病相关的分子。

流式细胞技术针对外泌体的表面抗原标记物进行检测，能够实现外泌体的高通量、多通道分析。但是由于外泌体的粒径小、折射率低，所以采用常规的流式细胞仪进行检测时往往需要将外泌体与beads连接以增大表面积、增强反射，操作耗时又费力。Tian等搭建了一种高灵敏度的流式细胞仪(HSFCM)，将可检测的外泌体粒径降至40nm，能够在不连接beads的情况下实现每分钟10000个外泌体的检测，并且能够结合免疫荧光的方法进行外泌体标志蛋白质的定量检测，目前该仪器已商品化。

外泌体（Exosome）介导瘤血管的形成和转移。外泌体（Exosome）能将自身的细胞因子IL-8和VEGF释放到细胞外，作用于内皮细胞膜表面受体，导致瘤血管快速形成并较终通过发生EMT过程促进瘤的迁移。瘤细胞来源的外泌体（Exosome）中含有血管生长素、血管内皮生长因子等，这些细胞因子以不同的作用方式促进瘤血管的形成，如VEGF通过唤醒磷酸酯酶C和第二信使的形成，诱导纤维蛋白溶解酶原活化物的表达，使得基底膜降解，从而促进瘤细胞的迁移。外泌体膜蛋白可以与靶细胞膜蛋白结合，进而唤醒靶细胞细胞内的信号通路。

目前，提取外泌体的方法主要有超速离心法、PEG沉淀法，但这些方法混有非常多的杂质，必须慎重分析得到的是否是外泌体。超速离心法存在操作繁杂、回收量不稳定，不能用于定量分析、必须使用昂贵的超速离心机、无法进行多样品分析等问题。因此外泌体研究相对困难，需要尽快开发操作简单、可提取高纯度外泌体的技术。因此，日本和光着眼于巨噬细胞的外泌体受体Tim4蛋白，制备Tim4细胞外域与磁珠结合的“Tim4磁珠”。Tim4通过磷酯酰丝氨酸（PS）法特异性结合Tim4蛋白和磁珠，再经过含有EDTA的洗脱缓冲液进行分离，提取高纯度的完整外泌体。外泌体主要来源于细胞内内溶酶体微粒内陷形成的多囊泡体，经多囊泡体外膜与细胞膜融合后释放到胞外基质中 。血浆血清外泌体提取试剂盒原理

不同类别的外泌体囊泡有三个征：表面具涂层的膜泡、内含纤维的膜泡、电子致密囊泡。exosome

外泌体研究可以指导诊治肝损伤、酒精或非酒精性脂肪肝等其他肝脏疾病。药物诱导肝损伤（DILI）大鼠模型中，尿外泌体中的蛋白含量减少，包括CD26、CD81和其他潜在的标志物蛋白。而另一项研究则发现DILI大鼠血清中分离到的外泌体含有更高水平的蛋白，如HSP70、HSP90等。MSCs来源的外泌体可以诱导肝细胞增殖相关基因表达，减弱CCL4诱导的肝损伤。而酒精刺激会促进外泌体的分泌，miRNAs水平也会升高，并促进细胞因子的分泌，唤醒单核细胞的分化。尽管已取得上述成果，我们对外泌体的研究尚不够深入，外泌体在肝脏生理和病理中的重要作用及其临床应用仍有待继续探索。exosome