温州支原体检测方法LAMP法

时间：2024年07月25日来源：

支原体污染的来源主要包括以下几个方面：

1. 实验室环境中可能存在支原体污染源，如空气中的尘埃、其他培养物中的支原体污染等。

2. 实验操作人员的手部、衣物或皮肤表面可能携带支原体，造成细胞培养的污染。

3. 培养基、血清等培养材料如果受到支原体污染，也会导致细胞培养物受到污染。

4. 细胞交叉污染，即使用已受污染的细胞株进行培养时，可能会污染其他细胞。

5. 实验器材带来的污染，如未彻底消毒灭菌的实验器材。

6. 人体是某些支原体的正常菌群，因此操作人员的疏失也可能成为污染源。

7. 细胞库管理不善，造成实验室间的相互污染。

8. 细胞培养过程中的细菌、酵母或霉菌污染在光学显微镜下可见，但支原体污染在光学显微镜下通常不可见，必须通过特定的检测方法进行检测

支原体去除和支原体预防有什么区别？温州支原体检测方法LAMP法

目前有 210 +种不同种类的支原体分布于人类、动物、昆虫和植物中，其中 20 +种在细胞培养中被发现为污染物。支原体在实验室中的传播来源多种多样，主要来源包括实验室人员、胎牛血清（FBS）或新生牛血清（NBS）、以及由猪来源的胰蛋白酶溶液。此外，来自其他实验室或商业供应商的细胞培养物、培养基、污染的试剂；非无菌供应品、培养基和溶液；实验室人员；培养箱；液氮；空气颗粒和气溶胶；抗*素的过度使用；细胞培养器皿的不正确密封；以及其他的支原体细胞培养物等都可能成为支原体的传播途径。
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支原体去除后对细胞检测的影响主要取决于去除方法和去除后的处理。以下是一些可能的影响：

1. 去除方法的影响：不同的支原体去除方法可能对细胞检测产生不同的影响。例如，一些去除方法可能会对细胞的代谢和增殖产生暂时性的影响，这可能会影响某些类型的细胞检测。

2. 去除后的处理：去除支原体后，细胞可能需要一段时间来恢复其正常的生理状态。在这段时间内，细胞的某些特性可能与去除前不同，这可能会影响细胞检测的结果。

3. 细胞恢复情况：如果细胞在去除支原体后能够成功恢复，那么它们在检测中的表现可能会与未受污染的细胞相似。然而，如果细胞恢复不完全，可能会影响检测结果的准确性。

4. 检测类型的相关性：不同的细胞检测方法对细胞状态的敏感性不同。一些检测可能对细胞的微小变化非常敏感，而其他检测则可能较为宽容。

支原体去除和支原体预防是两种不同的策略，它们在细胞培养和生物制品生产中都非常重要。

支原体去除是指在细胞已经被支原体污染后采取的措施。这通常涉及到使用特定的抗*素或化学试剂来消灭或抑制支原体的生长。例如，根据的描述，支原体去除试剂是一种混合抗*素制剂，它含有三种对支原体具有抑菌作用的组分，可以取得良好的支原体清*效果。使用这种方法时，细胞需要在含有去除试剂的培养基中培养一段时间，然后更换培养基并检测支原体是否已被清*。

支原体预防则是指在细胞培养过程中采取的预防措施，以避免支原体污染的发生。这包括保持实验室环境的清洁、使用无菌技术、对所有培养基和器材进行适当的消毒处理等。根据的背景介绍，预防措施还包括对细胞培养层流柜保持整洁，避免在无盖器皿上方舞动手掌和手臂，以及立即清理溢出物等。这些措施有助于减少支原体污染的风险。

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方法	灵敏度	优势	劣势
培养法	☆☆☆	ü 便捷 ü 便宜 ü 金标准	ü 费劳力 ü 耗时长 ü 需要特定的培养基 ü 特定支原体种类需要特定的培养基
DNA染色 (DAPI or Hoescht)	☆	ü 迅速 ü 便捷 ü 便宜	ü 可能难以判读结果 ü 无法鉴别支原体种属 ü 可能假阳性可能性
间接染色	☆☆☆	ü 迅速 ü 便宜 ü 易检测	ü 费时 ü 需要细胞系指示
ELISA	☆☆	ü 迅速 ü 客观，易判读结果 ü 可以鉴别支原体种属	ü 受抗体限制 ü 价格高
免疫染色	☆☆	ü 迅速 ü 可检测支原体种属 ü 价格略高	ü 可检测的支原体种属有限
放射自显影	☆☆	ü 迅速	ü 难以判读结果 ü 无法鉴别支原体种属 ü 费劳力
生物发光	☆☆	ü 迅速 ü 便捷 ü 便宜	ü 难以判读结果 ü 无法鉴别支原体种属
PCR	☆☆☆	ü 便宜 ü 迅速 ü 具有特异性	ü 可能假阳性可能性 ü 检测特异性依赖引物特异性 ü 需要提取DNA
Real-Time PCR	☆☆☆	ü 便捷 ü 迅速 ü 具有特异性 ü 结果可靠 ü 高通量	ü 可能假阳性可能性 ü 检测特异性依赖引物特异性 ü 需要提取DNA
LAMP	☆☆	ü 便捷 ü 无需DNA提取 ü *需10min左右的实验操作时间 ü 具有特异性 ü 高通量	ü 可能假阳性可能性 ü 检测特异性依赖引物特异性细胞培养中支原体预防措施。苏州细胞支原体检测方法LAMP法

支原体去除之后对细胞转染有无影响？温州支原体检测方法LAMP法

qPCR法，即定量聚合酶链式反应（Quantitative Polymerase Chain Reaction）法，是一种高度灵敏和特异的分子生物学技术，用于检测和定量DNA序列。在支原体检测中，qPCR法的原理主要包括以下几个步骤：

1. DNA提取：首先从待测样本中提取DNA，这可能包括细胞培养上清液或组织样本中的支原体DNA。

2. 设计特异性引物：针对支原体的保守DNA序列，如16S rRNA基因，设计特异性的DNA引物。

3. 荧光标记探针：使用荧光标记的探针，该探针与目标DNA序列互补，能够在PCR扩增过程中与扩增的DNA结合。

4. Ct值确定：Ct值（阈值循环数）是指在PCR反应中，荧光信号强度超过预定阈值的循环次数。Ct值越低，表示样本中支原体DNA的量越多。

5. 定量分析：通过标准曲线法或相对定量法，将Ct值转换为支原体DNA的定量结果。

qPCR法的优势在于其高灵敏度和特异性，能够检测到非常低水平的支原体污染，并且可以在短时间内提供结果，这对于需要快速检测的生物制品生产和细胞培养质量控制非常重要

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